DETERMINACIÓN DE LA CONDICIÓN MÉDICA EN UNA COLECCIÓN DE IGUANA VERDE (Iguana iguana)
DOI:
https://doi.org/10.22201/fc.25942158e.2025.4.1200Palabras clave:
condición corporal, hematocrito, parásitos, iguanidaeResumen
La iguana verde (Iguana iguana) tiene diversos fines zoonóticos como animal de compañía, en investigación y para producción de carne, lo que la expone a entornos fuera de su hábitat natural. Como ectotermos, tienen necesidades ambientales y nutricionales específicas, por lo que necesitan atención veterinaria especializada. Se evaluó la condición médica de 35 iguanas (18 ♀, 17 ♂), seleccionadas aleatoriamente de una colección biológica en la Ciudad de México (a 2240 m s.n.m.). Cada iguana se examinó en busca de lesiones, patologías, condición corporal, presencia de parásitos, y alteraciones hematológicas. La condición corporal se definió utilizando una escala visual de cuatro categorías (desde delgadez extrema a extremadamente corpulenta). Para obtener muestras de sangre, se extrajo sangre de la vena coccígea de cada iguana. Posteriormente, se realizaron conteos de glóbulos rojos (CGR) y blancos utilizando la cámara de Neubauer, y se determinó el hematocrito con la técnica del microhematocrito. También se realizó un examen coproscópico en 22 iguanas utilizando técnicas de flotación y directa. El peso promedio fue de 787.4 g (♀), y 570.1 g (♂). El 94 % mostró una condición corporal aceptable (categorías II-III). El 57 % no mostraron lesiones aparentes y el 34 % presentó lesiones leves. Se encontró una prevalencia del 18 % de oxiúridos y del 13.6 % de Balantidium. El hematocrito del 84.4 % de los individuos osciló entre 20.02 y 54.1 % (♀, 37.47 % y ♂, 36.71 %). El CGR fue de 1.15 x 106 μ/L (♀) y de 1.16 x 106 μ/L (♂). El 66 % de los individuos presentó una condición médica muy buena, y el 31 % una condición buena. Este estudio permitió comparar cuantitativamente y clasificar la salud de las iguanas, proporcionando información valiosa para colecciones biológicas, cuidadores de iguanas y veterinarios.
Citas
Ahmed, A., Ijaz, M., Ayyub, R. M., et al. (2020). Balantidium coli in domestic animals: An emerging protozoan pathogen of zoonotic significance. Acta Tropica, 203, 105298. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2019.105298
Alberts, A. C., Oliva M. L., Worley, M. B., Telford Jr S. R., Morris P. J., & Janssen D. L. (1998). The need for pre-release health screening in animal translocations: A case study of the Cuban iguana (Cyclura nubila). Animal Conservation 1, 165–172.
Arcos, J. L., Núñez, J., García, J., Rueda, R., Romero, R. P., & López, H. S. (2020). Body condition index in breeding black iguana females (Ctenosaura pectinata) in captivity. Revista de la Facultad de Ciencias Agrarias UNCuyo, 52, 349–359.
Ballinger, R. E., & Hipp, T. G. (1985). Hematological variations in the collared lizard, Crotaphytus collaris (Sauria: Iguanidae). Copeia, 3, 782–784.
Benn, A. L., McLelland, D. J., & Whittaker, A. L. (2019). A review of welfare assessment methods in reptiles, and preliminary application of the Welfare Quality® protocol to the pygmy blue-tongue skink, Tiliqua adelaidensis, using animal-based measures. Animals, 9, 27. https://doi.org/10.3390/ani9010027
Botreau, R., Veissier, I. Butterworth, A., Bracke, M. B. M., & Keeling, L. J. (2007). Definition of criteria for overall assessment of animal welfare. Animal Welfare 16, 225–228. https://doi.org/10.1017/S0962728600031390
Cai, W., Zhu, Y., Wang, F., et al. (2024). Prevalence of gastrointestinal parasites in zoo animals and phylogenetic characterization of Toxocaris leonina (Linstow, 1902) and Baylisascaris transfuga (Rudolphi, 1819) in Jiangsu province, eastern China. Animals, 14(3), 375. https://doi.org/10.3390/ani14030375
Calderón-Mandujano, R., & Pozo de la Tijera, C. (2003). Iguana iguana. Propuesta para la realización de 37 fichas biológicas de las especies de herpetofauna incluidas en la NOM-059 presentes en la Península de Yucatán. Museo de Zoología, ECOSUR- Unidad Chetumal. Bases de datos SNIB-CONABIO. Proyecto W030. Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad.
Campbell, T. (2015). Exotic Animal Hematology and Cytology. John Wiley & Sons.
Carrera-Játiva, P. D., Morgan, E. R., Barrows, M., & Wronski, T. (2018). Gastrointestinal parasites in captive and free-ranging birds and potential cross-transmission in a zoo environment. Journal of Zoo and Wildlife Medicine, 49(1), 116–128. https://doi.org/10.1638/2016-0279R1.1
Chávez, C., Serrano-Martínez, E. T., Tantaleán, M. V., Quispe, H. M., & Casas, V. G. C. (2015). Parásitos gastrointestinales en reptiles en cautiverio en Lima Metropolitana. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 26, 127–134. http://dx.doi.org/10.15381/rivep.v26i1.10909
Copete-Sierra, M. (2013). Aspectos generales de la evaluación hematológica en fauna silvestre y no convencional. Memorias de la Conferencia Interna en Medicina y Aprovechamiento de Fauna Silvestre, Exótica y No Convencional 9(1), 17–55.
Coppola, F., D’Addio, E., Casini, L., Sagona, S., Aloisi, M., & Felicioli, A. (2020). Hematological and serum biochemistry values in free-Ranging crested porcupine. Veterinary Sciences, 7(4), 171. https://doi.org/10.3390/vetsci7040171
Derinbay Ekici, Ö., Isik, N., & Guclu, F. (2011). Gastrointestinal parasites found in a green iguana (Iguana iguana). Eurasian Journal of Veterinary Sciences, 27(2), 131–134.
Divers, S. J. (2025). Clinical Procedures for Reptiles. En MSD Veterinary Manual. https://www.msdvetmanual.com/exotic-and-laboratory-animals/reptiles/clinical-procedures-for-reptiles. [Consultada 10 junio 2024]
Divers, S. J., & Stahl, S.J. (2019). Mader's Reptile and Amphibian Medicine and Surgery. Elsevier.
Divers, S. J., Redmayne, G., & Aves, E. K. (1996). Haematological and biochemical values of 10 green iguanas (Iguana iguana). Veterinary Record, 138, 203–205.
Donoghue, S. (1996). Nutrition of the Green Iguana (Iguana iguana). Proceedings of the Association of Reptilian and Amphibian Veterinarians 8, 24–27.
Esteban-Sánchez, L. J. García-Rodríguez, J. García-García, E. Martínez-Nevado, M. de la Riva-Fraga & Ponce-Gordo, F. (2024). Wild animals in captivity: an analysis of parasite biodiversity and transmission among animals at two zoological institutions with different typologies. Animals, 14(5), 813. https://doi.org/10.3390/ani14050813
Finkelstein, A. D., DiGesualdo, C. L., & Hoover, J. P. (2003). Comparison of biochemical profile values from paired plasma and serum samples of green iguanas, Iguana iguana, and red-tailed boa constrictors, Boa constrictor. Journal of Herpetological Medicine and Surgery 13(3), 5–9.
Frankenberger, J., Ballouard, J. M., Caron, S., Zablotski, Y., Kölle, P. (2024). Body condition scoring facilities healthcare monitoring in Hermann’s tortoises (Testudo hermanni ssp.). PLoS ONE 19(4), e0301892. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0301892.
Gafoor, K. W., & Tardieu, L. (2025). Coproparasitological survey on gastrointestinal parasites in green iguanas (Iguana iguana) of Trinidad and Tobago. Brazilian Journal of Biology, 85, e289502. https://doi.org/10.1590/1519-6984.289502
Girard, R. (2014). Manual de Parasitología. Técnicas para laboratorio de atención primaria de salud y para el diagnóstico de las enfermedades infecciosas desatendidas. Organización Panamericana de la Salud (OPS), Organización Mundial de la Salud (OMS), Agencia Canadiense Internacional para el Desarrollo (ACDI).
Girling, S. J., & Raiti, P. (2019). BSAVA Manual of Reptiles. Tercera edición. British Small Animal Veterinary Association.
González-Morales, J. C., Beamonte-Barrientos, R., Bastiaans, E., Guevara-Fiore, P., Quintana, E., & Fajardo, V. (2017). A mountain or a plateau? Hematological traits vary nonlinearly with altitude in a highland lizard. Physiological and Biochemical Zoology, 90: 638–645. https://doi.org/10.1086/694833
Greiner, E. C., & Mader, D. R. (2006). Parasitology. In D. R. Mader (Ed.), Reptile Medicine and Surgery (pp. 343–345). Elsevier.
Hanley, C. S., Hernandez-Divers, S. J., Bush, S., & Latimer, K. S. (2004). Comparison of the effect of dipotassium ethylenediaminetetraacetic acid and lithium heparin on hematologic values in the green iguana (Iguana iguana), Journal of Zoo and Wildlife Medicine 35, 328–332. http://doi.org/10.1638/03-057
Harr, K. E., Alleman, A. R., Dennis, P. M., Maxwell, L. K., Lock, B. A., Bennett, R. A., & Jacobson, E. R. (2001). Morphologic and cytochemical characteristics of blood cells and hematologic and plasma biochemical reference ranges in green iguanas. Journal of the American Veterinary Medical Association 218, 915–921.
Hažimusić N., Skapur, V., Hadzijunuzovic-Alagic, D., Livnjak, A. (2025). Hematological and biochemical parameters of captive fallow deer (Dama dama) in a zoo environment. Online Journal of Animal and Feed Research 15(1), 41–46. https://dx.doi.org/10.51227/ojafr.2025.6
Jacobson, E. R. (2007). Infectious Diseases and Pathology of Reptiles: Color Atlas and Text, Taylor & Francis.
Jenkins, J. (2012). Hematologic evaluation of reptiles: a diagnostic mainstay. Veterinary Technician 33, 1–3.
Kelly, H. (2021). Molecular investigation of protozoa and bacteria of veterinary-medical importance from the faeces of captive reptiles. [Tesis de Licenciatura]. University of Veterinary Medicine. http://hdl.handle.net/10832/3122
Knapp, C. R., Perez-Heydrich, C., Zachariah, T. T., Jollay, J., Schnelle, A. N., Buckner, S. D., Lattin, C. R., & Romero, L. M. (2018). Host sex, size, and hemoparasite infection influence the effects of ectoparasitic burdens on free-ranging iguanas. Ecology and Evolution, 9, 1946–1956. https://doi.org/10.1002/ece3.4887
Knotek, Z., Knotková, Z., Doubek, J., Pejfiilová, S., & Hauptman, K. (2003). Plasma biochemistry in female green iguanas (Iguana iguana) with calcium metabolism disorders. Acta Veterinaria Brno 72, 183–189.
Kusumarini, S. R., Ghalib, R. D., Virgiawan, G. P. T., Huler, R. Y., Muhamad, H., Fairusya, N., & Nurhidayah, N. (2024). Oxyuris spp. infection on green iguana (Iguana iguana) under different cage types. Journal of Parasite Science 8(1), 21–26. https://doi.org/10.20473/jops.v8i1.54142
Lewbart, G. A., Grijalva, C. J., Calle, P. P., Ingerman, K., Muñoz-Pérez, J. P., Quezada, G., Vera, C. A., Gentile, G., & Valle, C. A. (2019). Health assessment of Conolophus subcristatus, Conolophus pallidus, and C. subcristatus x Amblyrhynchus cristatus hybrid (Galápagos land iguanas). PLoS ONE 14,1–12. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0222884
Mader, D. (2006). Section 2 Biology and husbandry: lizards. In D. Mader (Ed.), Medicine Surgery (pp: 59–77). Elsevier.
MathWorks (2024). MATLAB (Versión R2024a). The MathWorks, Inc. https://www.mathworks.com/
Martínez, A., Lavín, S., & Cuenca, R. (2011). Hematología y citología sanguínea en reptiles. Clínica Veterinaria de Pequeños Animales, 31(33), 131–141.
Muñoz Zambrano, M. E., & Morón Cortijo, C. G. (2005). Manual de procedimientos de laboratorio en técnicas básicas de hematología. Ministerio de Salud, Instituto Nacional de Salud.
Novoa-Fajardo, D., Benitez-Tumay, I., Corredor-Matus, J. R., & Rodriguez-Pulido, J. (2008). Hallazgos hematológicos en iguana verde suramericana (Iguana iguana), de ejemplares ubicados en zona urbana y suburbana de Villavicencio (Meta). Revista Orinoquia, 12(1), 67–79.
Ochoa, L. N., & Bouda, J. (2007). Patología clínica veterinaria. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Universidad Nacional Autónoma de México.
Onorati, M., Sancesario, G., Pastore, D., Bernardini, S., Cruz, M., Carrión, J. E., Carosi, M., Vignoli, L., Lauro, D., & Gentile, G. (2017). Effects of parasitic infection and reproduction on corticosterone plasma levels in Galápagos land iguanas, Conolophus marthae and C. subcristatus. Ecology and Evolution, 7 (15), 6046–6055. https://doi.org/10.1002/ece3.3077
PANAFTOSA (Centro Panamericano de Fiebre Aftosa). (2017). Manual Veterinario de Toma y Envío de Muestras: Manual Técnico. Centro Panamericano de Fiebre Aftosa, Organización Panamericana de la Salud y Organización Mundial de la Salud.
Pejrilová, S., Knotková, Z. Knotek, Z., & Vrbas, V. (2004). Age-related changes of the haematological profile in green iguana (Iguana iguana rhinolopha). Acta Veterinaria Brno 73, 305–312.
Pérez-Padilla, J. R. (2022). Adaptation to moderate altitude hypoxemia: the example of the Valley of Mexico. Revista de Investigación Clínica, 74(1), 4–15. https://doi.org/10.24875/RIC.21000159
Proverbio, D., Perego, R., Baggiani, L., Ravasio, G., Giambellini, D., & Spada, E. (2021). Hematological and biochemical reference values in healthy captive tigers (Panthera tigris). Animals, 11(12), 3440. https://doi.org/10.3390/ani11123440
Racciatti D. S., Rial, F. A., Blanco, C., & Tallo-Parra, O. (2022). Ackonc-AWA: A multi-species animal welfare assessment protocol for wild animals under human care to overcome the use of generic welfare checklists. Frontiers in Veterinary Science, 9, 1033821. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.1033821
Ramírez, L. M., Martínez Blas, S. S., & Fuentes-Mascorro, G. (2012). Hemograma y características morfológicas de las células sanguíneas de tortuga golfina (Lepidochelys olivacea) de Oaxaca, México. Revista Científica, XXII(5), 468–476.
R Core Team. (2024). R: A Language and Environment for Statistical Computing (R 4.4.1). R Foundation for Statistical Computing. https://www.R-project.org/
Rand, A. S., & Boc, B. C. (1992). Size variation, growth and survivorship in nesting green iguanas (Iguana iguana) in Panama. Amphibia-Reptilia, 13(2), 147–156.
Rataj, A. V., Lindtner-Knific, R. Vlahović, K., Urška Mavri & Alenka Dovč. (2011). Parasites in pet reptiles. Acta Veterinaria Scandinavica, 53, 33.
Rodríguez, D., & Çitaku, I. (2020). Toma y envío de muestras para pruebas de laboratorio en animales no convencionales. REMEVET Fauna 3, 12–16.
Rom, B., Kornaś, S., & Basiaga, M. (2018). Endoparasites of pet reptiles based on coproscopic methods. Annals of Parasitology 64, 115–120. https://doi.org/10.17420/ap6402.142
Sacchi, R., Scali, S., Cavirani, V., Pupin, F., Pellitteri-Rosa, D., & Zuffi, M. A. L. (2011). Leukocyte differential counts and morphology from twelve European lizards, Italian Journal of Zoology 78 (4), 418–426. https://doi.org/10.1080/11250003.2011.568014, 418-426.
Salas M., Manteca, X., Abáigar, T., Delclaux, M., Enseñat, C., Martínez-Nevado, E., Quevedo, M.A., & Fernández -Bellon, H. (2018). Using farm animal welfare protocols as a base to assess the welfare of wild animals in captivity-case study: dorcas gazelles (Gazella dorcas). Animals, 8(7), 111. https://doi.org/10.3390/ani8070111
Salas, M., & Manteca, X. (2016). Evaluación del bienestar en animales de zoológico: indicadores basados en el animal, Zoo Animal Welfare Education Centre, 4, 1–2.
Salazar-Lozano, A. (2018). Coprológico y Coproparasitoscópico. Lister Laboratorios.
Salazar-Schettino, P. M., De Haro Arteaga, I., & Cabrera Bravo, M. (2010). Diagnóstico morfológico de las parasitosis. Tercera edición. Méndez Editores.
Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales (SEMARNAT). (2010). Norma Oficial Mexicana NOM-059-SEMARNAT-2010, Protección ambiental - Especies nativas de México de flora y fauna silvestres - Categorías de riesgo y especificaciones para su inclusión, exclusión o cambio - Lista de especies en riesgo. Diario Oficial de la Federación. https://www.dof.gob.mx/normasOficiales/4254/semarnat/semarnat.htm.
Sherwen, S. L., Hemsworth, L. M., Beausoleil, N. J., Embury, A., & Mellor, D. J. (2018). An animal welfare risk assessment process for zoos. Animals, 8(8), 130. https://doi.org/10.3390/ani8080130
Siddiqui, R., Maciver, S. K., & Khan, N. A. (2022). Gut microbiome-immune system interaction in reptiles. Journal of Applied Microbiology, 132(4), 2558–2571. https://doi.org/10.1111/jam.15438.
Snyder, G. K. (1971). Influence of temperature and hematocrit on blood viscosity. The American Journal of Physiology 220, 1667–1672.
Stacy, N., Heard, D., & Wellehan, J. (2019). Diagnostic sampling and laboratory tests. In: S. J. Girling & P. Raiti (Eds.), BSAVA Manual of Reptiles. Tercera edición. (pp: 115–133). British Small Animal Veterinary Association.
Taylor, M. A., Coop, R. L., & Wall, R. L. (2016). Veterinary Parasitology, Wiley Blackwell.
Tracchia, C. A. (2018). Medicina en Quelonios y otros Reptiles. Ediciones Fundación Azara, Universidad Maimónides.
Troiano, J. (2013). Colecta de muestras sanguíneas en reptiles. Memorias de la Conferencia Interna en Medicina y Aprovechamiento de Fauna Silvestre, Exótica y no Convencional 9, 68-7.
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